Histone H2A/H2B/H3/H4

Représentation du complexe formé par une particule de nucléosome (h3,h4,h2a,h2b) et un fragment d'ADN de 146 paires de bases de long (PDB 1AOI).

Domaine protéique

Pfam	PF00125
Clan Pfam	CL0012
InterPro	IPR007125
SCOP	1hio
SUPERFAMILY	1hio

Famille des histones de liaison H1 et H5

Structure de l'histone HIST1H1B (en) (PDB 1GHC)

Domaine protéique

Pfam	PF00538
InterPro	IPR005818
SMART	SM00526
SCOP	1hst
SUPERFAMILY	1hst

Les histones sont des protéines localisées dans le noyau des cellules eucaryotes^[1] et dans les archées. Elles sont les principaux constituants protéiques des chromosomes. Elles sont en effet étroitement associées à l’ADN dont elles permettent la compaction, cette action formant des structures appelées nucléosomes : l'ADN est enroulé autour des histones comme du fil autour d'une bobine. Les histones sont très riches en acides aminés basiques (lysine et arginine), dont la charge positive à pH physiologique permet une interaction forte avec les groupements phosphate de l'ADN qui portent des charges négatives.

Cela s’est produit à la fin du XIX^e siècle, en Prusse, plus de 50 ans avant la découverte de la structure de l’ADN. À cette époque, la composition du noyau cellulaire, dont la présence est évoquée dès 1702 par Anthoni van Leeuwenhoek lors de ses premières observations au microscope, puis formellement démontrée par le botaniste anglais Robert Brown en 1831, était encore mal connue. Quant à sa fonction, on l’ignorait totalement. Jusqu’à ce que quelques chimistes commencent à s’intéresser à la question, notamment en Allemagne, où la chimie organique structurale connaît, à cette époque, un fort développement.

À l’université de Strasbourg, le biochimiste allemand Albrecht Kossel , qui avait auparavant identifié les quatre bases constitutives de l’ADN (alors appelé « nucléine »), purifia, à partir des noyaux d’érythrocytes d’oie, une fraction basique, après avoir éliminé la fraction acide (c’est-à-dire l’ADN), grâce à un traitement à l’acide chlorhydrique. Dans un article publié en 1884, Kossel décrivit ce composant comme différent, par sa nature basique, des protéines classiques, et le nomme « histone », sans pourtant expliquer pourquoi il a choisi ce nom ^[2]. Il suggère aussi que cette fraction basique soit étroitement associée aux acides nucléiques, puisqu’elle n’était pas observable sans traiter l’extrait nucléaire avec de l’acide chlorhydrique. Cela rappelait, d’ailleurs, l’observation réalisée dix ans plus tôt par le biologiste suisse Johann Friedrich Miescher , qui avait non seulement caractérisé la nucléine (il s’agit donc du découvreur de l’ADN !) mais aussi purifié la protamine (un variant d’histone propre aux spermatozoïdes) à partir du sperme de saumon. Albrecht Kossel fut récompensé en 1910 par le prix Nobel de physiologie ou médecine. Mais il fallut encore plusieurs décennies avant d’établir la présence des histones dans toutes les cellules, et encore plus de temps pour découvrir comment elles s’assemblent autour de l’ADN ^[3]. Elles sont en effet étroitement associées à l’ADN dont elles permettent la compaction en formant des structures appelées nucléosomes. Depuis, le monde des histones continue de nous surprendre. On répertorie actuellement cinq histones « canoniques » dont quatre (H2A, H2B, H3, H4) composent le cœur du nucléosome et le cinquième (H1) est une histone de liaison entre les nucléosomes. Plusieurs dizaines de variants d’histones qui jouent des rôles majeurs dans différents aspects de la biologie ont aussi été découverts^[4]. L’étude des histones et des modifications qu’ils peuvent supporter sont à l’origine de l’épigénétique^[5].

Les histones sont des protéines^[6] basiques de masse moléculaire comprise entre 13 et 15 kDa. Elles sont caractérisées par un domaine C-terminal globulaire, le domaine histone-fold. Ce domaine, très conservé depuis les archées jusqu’aux eucaryotes supérieurs, consiste en trois hélices α séparées par deux courtes boucles^[7]. Il permet la dimérisation des histones selon un motif dit en poignée de main, qui sert de base à l’assemblage du nucléosome.

Le domaine histone-fold est retrouvé dans de nombreuses protéines autres que les histones, et définit la famille des protéines dite histone-like^[8].

Les extrémités N-terminales des histones ne sont pas structurées et dépassent à l'extérieur de l'ADN dans le nucléosome assemblé. Ces extrémités sont accessibles à des enzymes de modification.

Les histones comprennent cinq classes de protéines, regroupées en deux catégories en fonction de leur rôle dans la formation du nucléosome :

• les histones des classes H2A, H2B, H3 et H4 constituent les histones « de cœur », ainsi nommées car elles forment la particule de cœur du nucléosome : deux histones de chaque classe s’associent en un octamère autour duquel s’enroule le double-brin d’ADN sur environ cent cinquante paires de bases ;
• les histones de la classe H1 sont les histones dites « de liaison » : une histone de cette classe lie l’ADN à l’endroit où celui-ci entre et sort de la particule de cœur, et « scelle » ainsi le nucléosome^[9].

Chaque classe comprend plusieurs sous-types (excepté la classe H4) distingués en fonction de leur profil d’expression :

• les sous-types dont l’expression est couplée à la réplication de l’ADN ;
• les sous-types dont l’expression est indépendante de la réplication de l’ADN ;
• les sous-types exprimés spécifiquement dans certains tissus ou à certaines étapes du développement.

Dans les cellules cyclantes, les sous-types dont l’expression est couplée à la réplication sont majoritaires dans la chromatine, c’est pourquoi on les qualifie d’histones conventionnelles ou canoniques. Par opposition, les autres sous-types sont qualifiés de ''variants d’histones'' ; ils représentent généralement moins de 10 % des histones totales dans les cellules cyclantes, mais cette proportion peut atteindre 50 % dans les cellules différenciées^[10],[11].

Les gènes codant les histones conventionnelles sont généralement présents dans le génome en de multiples copies organisées en clusters — par exemple chez l’homme, trois clusters sur les chromosomes 1 et 6 ; chez la souris, trois clusters sur les chromosomes 3, 11 et 13^[12]. Ils présentent des caractéristiques atypiques pour des gènes eucaryotes, comme l’absence d’introns et une terminaison de la transcription signalée par une structure de type tige-boucle au lieu d’un signal de polyadénylation. À l’opposé, les gènes codants les variants d’histones ne sont présents qu’en une ou deux copies et sont répartis isolément dans tout le génome^[13] ; Ils possèdent tous au moins un intron et un signal de poly-adénylation.

Il y a environ cinquante-quatre paires de bases entre deux nucléosomes, cette valeur variant selon les espèces (par exemple, on en compte cent soixante-cinq pour la levure). Le niveau suivant de compaction de l'ADN fait intervenir d'autres protéines dites « non histones. »

Le degré de condensation de l'ADN autour des nucléosomes d'histones et des protéines non histones est variable le long des chromosomes, dans la chromatine. Il est faible dans l'euchromatine que l'on dit « ouverte » et accessible à la machinerie des ARN polymérases. Il est élevé dans l'hétérochromatine, que l'on dit « fermée » et « inaccessible » à la machinerie de transcription.

Ce degré de condensation est regulé par des modifications des extrémités N-terminales des histones, comme des phosphorylations, acétylations, méthylations, ubiquitinations, sumoylations, etc. l'ensemble de ces modifications étant catalysées par des enzymes spécifiques. Les modifications covalentes des histones agiraient soit directement en modifiant la compaction de l'enroulement d'ADN autour des nucléosomes, soit indirectement en constituant des « marques » permettant le recrutement de protéines capables de modifier la structure de la chromatine. Le modèle des modifications covalentes des histones agissant comme un code (le « code des histones ») a été proposé par Strahl et Allis en 2000 dans la revue Nature^[14]. Cependant, ce code est, semble-t-il, loin d'être universel et plutôt relativement spécifique selon les gènes et les cellules considérés.

Le code des histones établit un lien direct entre la modification de certains résidus de la queue des histones qui crée des liaisons pour des effecteurs protéiques et l’état transcriptionnel de la chromatine^[1].
Une modification d’histone peut en influencer une autre de manière synergique ou antagoniste ; c’est un mécanisme qui génère et stabilise des empreintes spécifiques.

L’acétylation (ajout de groupement acétyl) s’effectue sur certains résidus lysine précis par des enzymes nommées histones acétyl transférases (HAT).
Elle diminue généralement l’interaction inter-nucléosomes et entre les queues des histones et le fragment d’ADN qui fait le lien entre les nucléosomes. Ceci entraîne le relâchement de la chromatine, la faisant passer à l'état euchromatinien, et permet ainsi une meilleure accessibilité aux autres facteurs. L’acétylation est associée à une activation de la transcription et est facilement réversible grâce à l’action des histones désacétylases (HDAC).

La méthylation, quant à elle, peut s’effectuer soit sur des lysines soit sur des arginines et peut consister en l'ajout d'un, de deux ou de trois groupements méthyls.
Selon les résidus méthylés et le nombre de groupements ajoutés elle est associée à une activation ou une répression de la transcription. Longtemps considérée comme statique, la méthylation des histones s'avère être une modification réversible impliquée dans un processus dynamique, bien que plus stable que l'acétylation et la phosphorylation. Un nombre croissant d'histones déméthylases sont identifiés^[15].

De manière générale, ces deux types de modifications sont antagonistes, et la désacétylation des lysines doit précéder leur méthylation. Cet antagonisme entraine la mise en place d'un certain équilibre dynamique entre les territoires hétérochromatiniens (généralement non exprimables et méthylés sur certains acides aminés clés) et euchromatiniens (généralement exprimables et acétylés). Par exemple, la Lysine 9 de l'histone H3 est connue pour être associée à une répression de la chromatine environnante lorsqu'elle est méthylée. Cette méthylation est reconnue par une protéine, HP1, qui se fixe donc sur H3 méthylée. À son tour, HP1 attire la protéine Suv39, une Histone MethylTransférase, qui pourra méthyler la lysine 9 de l'histone H3 du nucléosome voisin, et ainsi de suite. On voit donc, comment, de proche en proche, les histones H3 seront méthylées et la chromatine sera condensée. Cependant, cette invasion hétérochromatinienne sera stoppée si la lysine 9 de H3 rencontrée est déjà acétylée. Ainsi se met en place un équilibre compétitif entre domaines chromatiniens exprimés et réprimés.

Les modifications des queues d'histones jouent le rôle de « marques » épigénétiques qui entraînent le recrutement de différentes classes de protéines, puisque les lysines acétylées ou méthylées sont reconnues par des domaines protéiques différents. De plus, le recrutement de certains facteurs au niveau de la chromatine nécessite l’existence préalable de modifications d’histones et de protéines déjà liées. Le code des histones est donc interprété dans le contexte d’autres facteurs associés à la chromatine et c’est la combinaison d’interaction entre les histones modifiées et d’autres facteurs qui détermine si une protéine est recrutée à la chromatine.

Dans plusieurs espèces eucaryotes, des variants d’histones, aussi appelés histones non canoniques, ont été découverts.

Ces variants ont une séquence qui diffère de celle des histones conventionnelles sur quelques résidus seulement (cas des variants dits homéomorphes), ou sur des portions plus importantes de la protéine (cas des variants hétéromorphes).

Les variants d’histones jouent des rôles majeurs dans différents aspects de la biologie tels que la réparation de l’ADN^[16],[17], l’organisation centromérique^[18], l’inactivation du chromosome sexuel X^[19] et une condensation spécifique des cellules gamètes mâles^[20],[21].

Chez l’arabette (Arabidopsis thaliana) une seule histone (H2A.Z) suffit à rendre ce taxon sensible des variations de température de moins de 1 °C. Cette histone modifie l’enroulement de l’ADN sur lui-même et contrôle ainsi l’accès à l’ADN de certaines molécules inhibant ou activant plusieurs dizaines de gènes. Cet effet « bio-thermostat » semble fréquent dans la nature, car également détecté chez la levure^[22],[23].

Les histones sont remplacées par des protamines, protéines riches en arginine et en cystéine.
La richesse en cystéine permet la formation de pont disulfure. Cette structure protège l'ADN lors d'éventuels déplacements liés à la fécondation.

 : document utilisé comme source pour la rédaction de cet article.

• Pour la section historique : Anna Salvetti, Histone, Med Sci (Paris) Volume 42, Numéro 1, Janvier 2026, Les mots de la science, page 88 , https://doi.org/10.1051/medsci/2025258

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• Protéine
• ADN
• Nucléosome

v · m Expression des gènes
Introduction à la génétique	Théorie fondamentale de la biologie moléculaire ADN ARN ARNm Protéine Code génétique Biosynthèse des protéines
Transcription	Régulation de la transcription Facteurs de transcription Facteur trans Facteur cis ARN-polymérase Promoteur Amplificateur Inactivateur Activation CRISPR Site d'initiation de la transcription Atténuation transcriptionnelle Régulation post-transcriptionnelle Modifications post-transcriptionnelles Édition Épissage Épissage alternatif Polyadénylation Dégradation des ARNm non-sens Interférence par ARN Micro-ARN
Traduction	Régulation de la traduction Facteurs d'initiation PABP Ribosome ARNt IRES Coiffe Régulation post-traductionnelle Modifications post-traductionnelles (ajout de groupe fonctionnels, peptidiques, modifications structurelles ou chimiques ; par exemple : phosphorylation) Protéolyse
Contrôle épigénétique	Extinction de gène CRISPRoff et CRISPRon Méthylation de l'ADN Code des Histones Gène Hox Gène soumis à empreinte Réseaux de régulation génique

v · m Compartiments, organites et structures des cellules d'eucaryotes et de procaryotes
Noyau	Chromosomes ADN Histones Nucléosomes Chromatine Centromère Télomères Nucléoplasme Protéasomes Matrice nucléaire Lamine Lamina Organisateur nucléolaire (NOR) Nucléole Corps Cajal Pores nucléaires Enveloppe nucléaire
Ribonucléoprotéines	Ribosomes (ARN ribosomique) Voûtes
Système endomembranaire	Enveloppe nucléaire Réticulum endoplasmique lisse rugueux Appareil de Golgi Dictyosomes Saccules Vésicules Clathrine Exosomes Endosomes Phagosomes Lysosomes Vacuoles Acrosomes Spitzenkörper Parenthesome Magnétosomes Porosomes Hémifusomes Membrane plasmique
Cytoplasme	Endoplasme Ectoplasme Axoplasme Cytosol Microcompartiments bactériens (Carboxysomes) Cytosquelette Filaments d'actine (microfilaments) Filaments intermédiaires Microtubules Centre organisateur des microtubules : centrosome (MTOC) Centrioles Diplosome Corps basal (en) Corps polaire du fuseau (en) (SPB)) Myofibrille Granules Mélanosomes Glyoxysomes Peroxysomes Corps de Weibel-Palade Anammoxosomes
Endosymbiotes	Mitochondries Membrane externe Espace intermembranaire Membrane interne Crêtes (cristae) Matrice mitochondriale Génome mitochondrial Mitosomes Hydrogénosomes Plastes Chloroplastes thylakoïdes Étioplastes Proplastes Chromoplastes Gérontoplastes (en) Leucoplastes Amyloplastes (Statolithes) Oléoplastes Protéinoplastes Tannosomes
Structures périphériques	Matrice extracellulaire Glycocalyx Lame basale Desmosome Enveloppe cellulaire (en) Paroi cellulaire Paroi bactérienne Membrane externe Périplasme Membrane interne Axonème Flagelles Pili / Fimbriae Cils Microvillosités Stéréocils Migrasomes Rétractosomes Zombosomes

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